全球臨床病例 - 後備母豬引入之後，問題伴随而來……
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改變後備動物的來源一直都是困難的決定。在将新動物引入養殖場前，僅通過測試進行監測是不夠的。
該臨床案例影響了使用3點式養殖系統的2000頭母豬的豬場。後備母豬來自公司自有擴繁場，該場外購小母豬，并從20公斤飼養到100公斤。之後将後備母豬被轉入豬場。在小母豬進入生産豬場前，大部分健康和監測計劃都是在這些養殖場進行的。接收豬場正在生産6公斤仔豬，其健康狀況為PRRS陽性，而豬痢疾，獸疥癬和萎縮性鼻炎為陰性。
選擇程序基于以下幾點：
1. 小母豬篩選程序
出生時體重小于1公斤的雌性仔豬均不用做種豬
在20公斤，将它們轉到生長舍前，需進行另一項選擇，評估腿部和腳部的健康程度，奶頭和整體發育。
在準備将小母豬送到生産舍前，進行另一項選擇，檢查腿部狀況，奶頭和外部生殖器官。
2. 後備母豬健康計劃
斷奶時，斷奶小母豬和雄性仔豬接種圓環病毒2型和支原體疫苗。
在飼養期間，從20-100公斤，使用下列疫苗：
約10周接種疫苗。
4周後重新接種：
僞狂犬和流感
減毒藍耳病活疫苗
圓環病毒2型和支原體。這種疫苗很重要，因已實施了針對PCV2的大規模疫苗接種，故該病毒排毒已顯着減少，且許多後備母豬在生長期結束到達生産場時為PCV2陰性。在仔豬接種PCV2疫苗前，後備母豬養殖期結束時，所有動物均為圓環病毒陽性。
27周：藍耳病滅活疫苗
29周齡和4周後重複接種：細小病毒和丹毒疫苗。
最好在交配前一個月（36-38周齡）完成免疫接種程序。由于不同的健康問題，決定停止從現有養殖場引入動物，故商品豬場沒有後備動物（圖1）。 這個決定的後果是：
由于缺少後備母豬，減少每周交配次數。
減少淘汰以試圖維持交配目标：保留在其他情況下會被淘汰的母豬。
超過7胎的母豬的增加導緻了繁殖能力和仔豬品質可變性的增加（母豬生産更差，飼料成本更高）。
Figure 1:Evolution offarm matings
圖1：豬場交配演變圖
為了達到交配目标，決定從外部購買後備母豬。在小母豬100公斤時引進，比接收豬場的健康狀況高，且具有更好的繁殖技術指标。
這些後備母豬飼養于較遠的區域，後備母豬适應計劃基本與其使用自己擴繁場後備母豬的适應計劃相同。然而，為了減少時間，使用聯合疫苗接種，且疫苗接種和再接種間隔三周進行。
外源後備母豬的效率
該批次的繁殖效率良好。不到2％的後備母豬被淘汰，返情率低于6％。分娩時，總産仔數較高（增加了1.2頭仔豬）。正如預期的那樣，仔豬的出生體重較低，體重差異性增加。
臨床問題的出現
在這些小母豬分娩後的第一天，其仔豬出現腹瀉，導緻體況欠佳（照片1）。抗生素治療盡管降低了仔豬腹瀉的嚴重程度和死亡率，但臨床症狀并未好轉。換句話說，體重減輕的仔豬數量增加，最終死亡或弱仔數顯着增加。
Photo 1: Gilt litter with strong diarrhoeain the first days of life
照片1：出生第一天嚴重腹瀉的仔豬腹瀉和仔豬體況欠佳造成母豬乳腺發育不良，乳腺部分排空（圖2）。
Photo 2: Mammary glandinvolution in the first stagesof lactation.
照片2：泌乳第一階段的乳腺退化。在保育舍可見仔豬體況下降，由于斷奶仔豬體況差而産生更多的較小仔豬。
診斷方法
對環境和豬舍條件進行了評估，并回顧了管理條件。
我們使用了一個基本的檢查清單，了解分娩管理中可能産生腹瀉的原因（表1）
表1:分娩管理
| 風險條件 | 影響 | 理想條件 | 影響 | ||
| 環境 | 産房溫度 | >28ºC <> | · ↓ 采食量和母乳産量下降 ·動物福利下降 |
· 母豬熱中性區(18-22ºC)且無墊料 | · ↑ 采食量增加 · ↑ 母乳産量增加 |
| 加熱墊溫度 | 冷 | · 碾壓 | · 紙墊料 · 加熱墊溫度為36°-38°C · 額外加熱燈 · 仔豬快速死亡 |
·仔豬在加熱墊上休息 · ↓碾壓 |
|
| 母豬飼喂 | 母豬飲水器 | 水流量在2升/每分鐘以下 | · ↓母乳産量下降 · ↓水的物理，化學和微生物質量下降 |
· >2升/分鐘 · 恒定水位的飲水器 |
· ↑ 采食量增加 · ↑ 母乳産量增加 |
| 母豬料槽 | 剩餘飼料 發酵 |
· 衛生 · 易獲得 |
|||
| 飼喂程序 | 從妊娠下半期到結束，采食量不足 | 潛在的乳腺水腫 | ·檢查妊娠和分娩期飼養水平 | ↑ 下一次泌乳開始時的初乳和母乳産量增加 | |
| 飼料 | 類型和采食量水平 | ||||
| 空欄期，清洗和消毒 | 空欄期 | >清洗後超過3天 濕度 |
· ↑ 感染壓力增加 · 出現腹瀉 |
· 幹燥房間 · >3天 |
· ↓感染壓力下降 |
| 清洗和消毒 | 缺乏清洗和消毒 | · 清潔劑 · 清洗糞坑 · 輪換消毒 |
樣本被送到實驗室：未用藥仔豬的直腸拭子和腸内容物（表2）。進行冠狀病毒PCR以及大腸杆菌的毒力因子測試。如通過該種方法未獲得确鑿的數據，則進行組織病理學檢查。
表2：腸内容物樣品的結果
Pig333wechat從拭子中分離出沒有毒力因子的大腸杆菌（表3），這極有可能使仔豬的臨床症狀複雜化并導緻更高的死亡率。
| 菌株 | 粘附素 | 毒素 | |||||||
| F4 (K88) | F5 (K99) | F41 | F6 (987P) | F18 | LTI | ST-Ia | ST-II | Stx2 | |
| 大腸杆菌 | - | - | - | - | - | - | - | - | - |
| 大腸杆菌 | - | - | - | - | - | - | - | - | - |
| 大腸杆菌 | - | - | - | - | - | - | - | - | - |
在屍檢中僅檢測到半透明的腸道，懷疑腸絨毛嚴重受損。輪狀病毒導緻成熟腸細胞及其複制位點的破壞。因未成熟腸細胞增殖的分泌活性而引起腹瀉。在一些動物中觀察到腸道充血和淡黃色的腹瀉。
使用抗生素治療腹瀉，其主要病原體是病毒，而細菌則使臨床症狀更加複雜化，誘發仔豬微生物群的重要變化及其腸道完整性，從而阻礙其正常發育（照片3）。
Photo 3: Piglets recovering from the enteric process caused by rotavirus and bacterial complications, after antibiotic treatment.
照片3：抗生素治療後，由輪狀病毒和細菌并發症引起的腸道問題恢複的仔豬。治療方法
首先，為分娩前一個月的懷孕小母豬提供受感染動物的糞便材料。這一措施通常會帶來良好的結果，但其有一些缺點和非常重要的健康風險。執行該做法時潛在的不便操作之處包括：
将牛奶或硫代硫酸鹽和糞便加入水中以去除氯至關重要;
有時沒有足夠的腹瀉物, 故添加一部分腸道。在PRRS陽性豬場，這是一個重要的風險（即使豬場可能穩定，總有一部分動物可能處于病毒感染期）
不應使用5日齡以上的仔豬的材料。在這段時間後可對輪狀病毒進行免疫接種，鑒于它是一種非常普遍的病毒，且感染劑量低，但豬場也可能存在其它病原體的傳播。
對于所有這些缺點，我們認為不使用或推薦糞便材料。
在此案例，為解決這個問題采取的措施包括：
因現有針對大腸杆菌病和産氣莢膜梭狀芽孢杆菌C型類毒素（還包括減毒活輪狀病毒A）的可用疫苗，妊娠母豬在妊娠第60和90天接種疫苗。目的是在初乳中獲得高抗體濃度。初乳反映了母豬的免疫史。在此案例，接種疫苗是最安全和最有效的治療方法，盡管必須确保仔豬通過初乳攝入正确的被動免疫。
監測仔豬初乳攝入量：确保較小仔豬和那些在出生過程中遭受熱應激或高壓力的仔豬在出生後頭幾個小時内攝入初乳。讓仔豬快速幹燥的額外的熱源和紙張是增加仔豬活力的有效替代品。
在妊娠最後幾天和哺乳期第一天間的過渡時期監測母豬的衛生和飼喂是避免乳房水腫和髋關節炎的基本措施（照片4）。由于初乳産量不足，兩種情況都會導緻臨床症狀。必須特别注意妊娠後三分之一和圍産期的飼料增加水平：因為它不僅會導緻初乳生産失敗，而且會導緻分娩後的産奶失敗。
Photo 4:Mammary gland oedema in the peripartum
照片4：圍産期乳腺水腫
4. 顯然，分娩舍采取了嚴格的衛生措施，以減少感染壓力。為了減少仔豬漏糞闆側面的病毒載量，用泡沫清洗産仔欄是必須的。使用泡沫可使消毒劑很容易到達漏糞闆的所有角落。必須徹底進行清潔工作，清理糞坑并在母豬分娩區入口處洗澡。在分娩開始前，使用洗必泰泡沫清洗母豬和地闆，并晾幹。
5. 監測初生仔豬的活力至關重要，因初乳攝入量取決于它。監測母豬溫度和分娩時間至關重要
結論
我們不知道輪狀病毒是否已在豬場存在，或它是否由新的後備母豬帶入。事實上，輪狀病毒和大腸杆菌繼發感染加重了腸道問題，增加了臨床愈合過程的時間。這降低了斷奶仔豬的品質，增加了死亡率和母乳産量損失。
關于更換動物源豬場的決定總是很困難。在将新動物引入豬場之前通過測試進行監測是不夠的。
泌乳過程中腸道問題的發生每天都在增加。為了減少感染壓力，我們的主要目标是依靠疫苗接種，動物管理措施以及分娩室和母豬的清潔和消毒方案。
如果沒有正确控制仔豬的初乳攝入量，僅接種疫苗并不能确保成功。必須緊急處理任何影響母豬初乳産量或仔豬初乳攝入量的事件。一旦所有管理因素得到糾正，使用疫苗将會獲得成功。
近年來增加的繁殖力減少了仔豬的初乳攝入量：較低的出生體重會降低其活力，從而降低仔豬的初乳攝入量。
來源：Pig333
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